一、实验动物常用的麻醉方法

(一)全身麻醉方法

1.吸入麻醉 是将乙醚、氯仿等挥发性麻醉药由动物经呼吸道吸入体内而产生麻醉效果的方法。吸入麻醉通常适用于麻醉时间较短的动物实验或用做基础麻醉或注射麻醉的辅助麻醉。

（1）大鼠、小鼠、豚鼠的吸入麻醉：吸入麻醉一般需借助麻醉罐进行，常用的麻醉罐大多为透明带盖的容器，大小根据动物体积而定。将动物放入含有吸附乙醚等挥发性麻醉药的棉球或纱布的麻醉罐中，盖好盖子，观察动物的行为，动物即刻出现兴奋、继而出现抑制，随即自行倒下。当动物角膜反射迟钝、肌肉紧张度降低时，即可取出动物。

（2）家兔、猫的吸入麻醉：麻醉方法基本同大鼠、小鼠。将动物投入麻醉罐中 1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，随后失去运动能力，这表明动物已进人麻醉状态，4~6min 可将动物麻醉。当发现动物倾斜后仍不能站立，则说明已进入深度麻醉期，需立刻取出动物。

(3)猪、犬的吸入麻醉：首先将猪、犬的嘴用绳绑牢固，然后根据动物的大小，选择合适的麻醉口罩，将纱布置入口罩内，加上乙醚等挥发性麻醉药。开始麻醉时，麻醉药的用量可以多些，之后逐渐减少。动物吸入乙醚等挥发性麻醉药后，开始处于兴奋状态，出现挣扎，呼吸不规则，随后动物的呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，这说明猪、犬已进入麻醉状态，去除猪、犬嘴绑绳，开始实验。最常用的吸入麻醉药为乙醚，但动物吸入乙醚后可能发生窒息。若发生窒息，应暂停吸入乙醚，待呼吸恢复正常后再实施吸入麻醉。

2.注射麻醉 是使用非挥发性全身麻醉药进行麻醉的方法。注射麻醉方法简便，麻醉时间较长，适用于需长时间麻醉的动物实验。一般采用静脉注射、腹腔注射、肌内注射等方法进行麻醉。免、猫、犬、猪等大动物常采用静脉注射、肌内注射的方法进行麻醉；小鼠、大鼠、豚鼠等小动物常采用腹腔注射的方法。常用麻醉药的剂量及注射途径见表 1-4-1。但实际工作中影响麻醉效果的因素很多，包括动物的品系、年龄、环境条件、麻醉药的纯度、操作人员的技术熟练程度等，因此表中的数据仅供参考，不可盲目照搬。注射麻醉法麻醉时，给予麻醉药后，动物即倒下，全身无力，反应消失，表明已达到适宜的麻醉效果，是进行手术的最佳时期。若动物四肢开始抖动，表明接近苏醒。若手术尚未完成，需及时将含有乙醚等挥发性麻醉药的麻醉瓶放在动物口、鼻处，给予辅助吸入麻醉，直至手术完成。若实验过程中，动物发生抽搐等症状，说明麻醉过深，可能是死亡的前兆，需立刻进行急救处理。

3.气管内插管麻醉 是将一特制的导管置入动物的气管内，建立一人工的通气管，通过这一气管内导管进行麻醉的方法。此麻醉方法的优点在于无论任何手术体位，都可使动物保持呼吸道通畅；可防止异物进入呼吸道，也便于清除气管内的分泌物；便于给氧吸入和辅助呼吸；能主动地对动物重要的生理功能指标进行监测、调整和控制，为实验创造最佳工作条件。

(二)局部麻醉方法

局部麻醉药按化学结构分类，可划分为酯类和酰胺类两种局部麻醉药。酯类局部麻醉药有可卡因、普鲁卡因、丁卡因和氣普鲁卡因；酰胺类局部麻醉药有利多卡因，布比卡因、卡博卡因和辛可卡因等。局部麻醉常用的方法是表面麻醉、浸润麻醉、区域阻滞麻醉及传导麻醉等。

表面麻醉：将穿透力强的局部麻醉药直接作用于黏膜表面，使黏膜下神经末梢麻醉。可将药物配成不同浓度的溶液、凝胶和糊剂，通过滴入、喷雾、涂布和灌注等方法将其应用到眼、口腔、鼻腔、喉、外耳道或尿道等黏膜处，产生麻醉。

浸润麻醉和区域阻滞麻醉：沿手术切口线逐层注射局部麻醉药或手术区周围部位注射药物，阻滞神经纤维而达到麻醉作用，前者称为浸润麻醉，后者称为区域麻醉。适用于犬、猫皮肤撕裂窗缝合、皮肤疣及皮肤肿瘤的切除、幼犬截尾术和皮肤活组织的采集等。也可用于一些大的手术（如剖腹产），并配合应用安定镇痛术，可避免因全身麻醉造成对胎儿的抑制，常用普鲁卡因和利多卡因。为减慢药物的吸收和延长麻醉效力，常于局麻药中加入1：50000或1：100000浓度的肾上腺素。

二、常用麻醉药的剂量及注射途径

实验动物常用麻醉药的剂量及注射途径见表 1-4-1。

表 1-4-1 实验动物常用麻醉药的剂量及注射途径

注：I.V.，静脉注射；I.P.，腹腔注射；I.M.，肌内注射

三、麻醉监测和麻醉意外的抢救

(一)麻醉监测

麻醉过程中，若使用静脉注射的方法，注射速度必须缓慢，同时需时刻观察肌肉紧张性、角膜反射和动物对皮肤疼痛的反应。当这些活动明显减弱或消失时，立即停止注射。动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施，尤其在冬季更应注意观察体温变化，可在动物肛门插入体温计(正常的肛门温度参考值：大鼠37.5℃，小鼠37.5℃，家兔39.5℃，豚鼠39.5℃，狗38.5℃，猪39.0℃，羊39.5℃，猴39.0℃)。

(二)麻醉意外的抢救措施

当实验进行中因麻醉过量、大失血、过强的创伤、窒息等各种原因，而使动物血压急剧下降，甚至测不到；呼吸极慢而且不规则，甚至发生呼吸停止、角膜反射消失等临床死亡症状时，应立即进行急救。急救的方法可根据动物情况而定。对犬、兔、猫常用的急救措施有下面几种：

1.注射强心药 可静脉注射0.1%肾上腺素1ml，必要时直接作心脏内注射。如动物注射肾上腺素后心脏虽已搏动但极为无力时，可静脉或心腔内注射1%氯化钙5ml。

2.注射呼吸中枢兴奋药 可静脉注射山梗茶碱或尼可刹米。给药剂量为尼可刹米：每只动物1次注射25%尼可刹米 1ml。山梗茶碱：每只动物1次可注入1%山梗茶碱0.5ml。

3.快速注射高渗葡萄糖液 一般常采用经动物股动脉逆血流加压、快速、冲击式的注入 40%的葡萄糖溶液。注射量视动物而定，如犬可按2~3ml/kg体重计算。这样可刺激动物血管内感受器反射性地引起血压、呼吸的改善。

4.动物快速输血、输液 做失血性休克或死亡复活等实验时常采用。

5.人工呼吸 可采用双手压迫动物胸进行人工呼吸。

四、实验动物麻醉的注意事项

1.在使用麻醉药过程中，随时注意观察动物的反应，尤其是采用静脉注射时，绝不可将按体重计算出的用量匆忙进行注射。

2.动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施，尤其在冬季更应注意（观察体温变化，可在动物肛门插入体温计）。

3.静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张性、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。